Génétique moléculaire des chloroplastes

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Portrait Goldschmidt-Clermont

Prof.  Michel  Goldschmidt-Clermont
Professeur titulaire
Téléphone: +41 22 379 61 88


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Laboratoire de Génétique Moléculaire des Chloroplastes
Dpt de Botanique et Biologie Végétale
Université de Genève, Sciences III
Quai Ernest-Ansermet 30
CH-1211 Genève 4

Le groupe est hébergé en Biologie Moléculaire.


 

Recherches
Soutien financier
Enseignement
Publications: articles scientifiques
Publications: chapitres de livre

 

Recherches

Régulation de l'expression des gènes du chloroplaste.

Les chloroplastes sont les centrales solaires des cellules végétales. Ils contiennent un réseau de membranes appelées thylacoïdes, où les complexes photosynthétiques transforment l’énergie lumineuse en énergie chimique. Celle-ci est ensuite utilisée pour produire des métabolites comme les sucres, qui sont fabriqués à partir du dioxyde de carbone atmosphérique (CO2) et de l’eau. Au cours de l'évolution, les plastes ont gardé un petit génome indépendant, issu de leur ancêtre endosymbiotique, une cyanobactérie. La biogenèse de l'appareil photosynthétique demande donc l'expression coordonnée de deux génomes, nucléaire et chloroplastique.
Chlamydomonas L'analyse génétique de mutants de Chlamydomonas reinhardtii, une algue verte, a révélé l'existence de nombreux facteurs codés dans le noyau qui sont importés dans le chloroplaste, où ils sont nécessaires à l'expression des gènes plastidiques. Ces facteurs interviennent dans des étapes post-transcriptionelles, comme la maturation des ARNs, l'épissage ou la traduction (Figure 1). Chacun de ces facteurs montre une spécificité étonnante pour un gène particulier (ou un petit groupe de gènes) du chloroplaste.

Par exemple, l'ARN messager de psaA est assemblé à partir de trois transcrits indépendants codés séparément par le génome du chloroplaste. La maturation de l'ARN messager de psaA implique deux étapes d'épissage (en trans) qui dépendent d'au moins quatorze gènes nucléaires. Nous avons isolé les gènes de certains de ces facteurs d'épissage (Raa1, Raa2, Raa3) et montré que ces facteurs font partie de grands complexes ribonucléoprotéiques. Dans les mutants déficients dans l’épissage de psaA, nous avons observé la surexpression du précurseur de psaA-exon 1. Cette surexpression dans les mutants s’applique aussi à des gènes reporters chimériques placés sous le contrôle du promoteur et de la région 5’ non-traduite de psaA-exon1. Nous avons entrepris l’étude des mécanismes de cette régulation par rétro-inhibition (feedback négatif).

Nous étudions aussi d’autres protéines importées dans le chloroplaste et qui sont nécessaires à la maturation du mARN psaB (Mab1), à sa traduction (Tab2, Tab3) et à la traduction de psaA (Taa1) (Figure 1).

 

Figure 1
Figure 1: Dissection génétique de la biogenèse du photosystème I
(+)

Acclimatation à la lumière de l’appareil photosynthétique.

La chaine de transport électronique photosynthétique dans les membranes thylacoïdes du chloroplaste comporte deux photosystèmes (PSII et PSI) qui travaillent en série pour produire le pouvoir réducteur (NADPH) et l’énergie (ATP) nécessaires à la fixation du CO2. Selon la qualité et l’intensité de la lumière, une partie de l’antenne collectrice de lumière LHCII peut s’associer soit au PSII soit au PSI, ce qui assure l’équilibre de leur activité et donc un fonctionnement optimum de la chaine photosynthétique. Ce mécanisme, appelé transition d’état, permet aussi de répondre aux demandes métaboliques de la cellule en modulant le flux cyclique autour du PSI, qui permet la production d’ATP sans production de NADPH. Les transitions d’état sont régulées par des protéines kinases (Stt7 et Stl1 chez Chlamydomonas, STN7 et STN8 chez Arabidopsis) qui phosphorylent des protéines clés de l’antenne LHCII et du PSII. Nous avons récemment identifié une phosphatase spécifique, PPH1/TAP38, qui déphosphoryle les sous-unités de LHCII et contribue ainsi à la réversibilité des transitions d’état. Pour analyser les relations entre les différents mécanismes d’acclimatation à la lumière, nous développons un modèle mathématique de la chaine de transport électronique, en collaboration avec le Prof. Oliver Ebenhöh (University of Aberdeen).

 

Figure 2
Figure 2: Les transitions d’état
(+)

Les micro-algues comme source de protéines recombinantes et de biocarburants

Dans le cadre du Programme National de Recherche PNR59 (Utilité et risques de la dissémination de plantes génétiquement modifiées), nous avons optimisé l’expression de protéines transgéniques dans le chloroplaste de Chlamydomonas. Nous avons montré que des boucles de rétro-action négatives peuvent limiter l’expression des transgènes et que les protéines recombinantes peuvent être soumises à une dégradation protéolytique.

Le but du projet FP7 Sunbiopath est l’amélioration de la conversion de l’énergie lumineuse en biomasse en utilisant les micro-algues. Dans ce contexte, nous poursuivons nos travaux sur le contrôle de l’expression des transgènes dans le chloroplaste pour en faciliter l’ingénierie métabolique.

 

Une description plus détaillée de ces recherches, et d'autres qui sont aussi menées dans le laboratoire du Prof. Rochaix, se trouve sur le site: http://www.molbio.unige.ch/rochaix/index.php.

 


 

Soutien financier

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Enseignement

  • Biologie du développement.

  • Physiologie végétale.

  • Biologie moléculaire de la cellule TP.

  • Introduction à la recherche en biologie moléculaire végétale.

  • Chapitres choisis de biologie moléculaire

  • Master course in Genetics, Development and Evolution (14B017)

 


 

Publications: articles scientifiques

Samol I., Shapiguzov A., Ingelsson B., Fucile G., Crevecoeur M., Vener A.V., Rochaix J.D. & Goldschmidt-Clermont M.: Identification of a Photosystem II Phosphatase Involved in Light Acclimation in Arabidopsis.
Plant Cell 2012. PMID: 22706287.

Willig A., Shapiguzov A., Goldschmidt-Clermont M. & Rochaix J.D.: The phosphorylation status of the chloroplast protein kinase STN7 of Arabidopsis thaliana affects its turnover.
Plant Physiol 2011. PMID: 21976483.

Day A. & Goldschmidt-Clermont M.: The chloroplast transformation toolbox: selectable markers and marker removal.
Plant Biotechnol J 2011, 9(5):540-553. PMID: 21426476.

Stern D.B., Goldschmidt-Clermont M. & Hanson M.R.: Chloroplast RNA metabolism.
Annu Rev Plant Biol 2010, 61:125-155. PMID: 20192740.

Shapiguzov A., Ingelsson B., Samol I., Andres C., Kessler F., Rochaix J.D., Vener A.V. & Goldschmidt-Clermont M.: The PPH1 phosphatase is specifically involved in LHCII dephosphorylation and state transitions in Arabidopsis.
Proc Natl Acad Sci U S A 2010, 107(10):4782-4787. PMID: 20176943.

Michelet L., Lefebvre-Legendre L., Burr S.E., Rochaix J.D. & Goldschmidt-Clermont M.: Enhanced chloroplast transgene expression in a nuclear mutant of Chlamydomonas.
Plant Biotechnol J 2010:Epub PMID: 20809927.

Goldschmidt-Clermont M., Rahire M. & Rochaix J.D.: Redundant cis-acting determinants of 3' processing and RNA stability in the chloroplast rbcL mRNA of Chlamydomonas.
Plant J 2008, 53(3):566-577. PMID: 17996019.

Merendino L., Perron K., Rahire M., Howald I., Rochaix J.D. & Goldschmidt-Clermont M.: A novel multifunctional factor involved in trans-splicing of chloroplast introns in Chlamydomonas.
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Goldschmidt-Clermont M.: Book review Chloroplast Biogenesis: from Proplastid to Gerontoplast. By Udaya C. Biswal, Basanti Biswal and Mukesh K. Raval. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands, 2003, 353 pp.
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Finazzi G., Rappaport F. & Goldschmidt-Clermont M.: From light to life: an interdisciplinary journey into photosynthetic activity.
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Rivier C., Goldschmidt-Clermont M. & Rochaix J.D.: Identification of an RNA-protein complex involved in chloroplast group II intron trans-splicing in Chlamydomonas reinhardtii.
EMBO J 2001, 20(7):1765-1773. PMID: 11285239.

Vaistij F.E., Goldschmidt-Clermont M., Wostrikoff K. & Rochaix J.D.: Stability determinants in the chloroplast psbB/T/H mRNAs of Chlamydomonas reinhardtii.
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Vaistij F.E., Boudreau E., Lemaire S.D., Goldschmidt-Clermont M. & Rochaix J.D.: Characterization of Mbb1, a nucleus-encoded tetratricopeptide-like repeat protein required for expression of the chloroplast psbB/psbT/psbH gene cluster in Chlamydomonas reinhardtii.
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Barkan A. & Goldschmidt-Clermont M.: Participation of nuclear genes in chloroplast gene expression.
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Perron K., Goldschmidt-Clermont M. & Rochaix J.D.: A factor related to pseudouridine synthases is required for chloroplast group II intron trans-splicing in Chlamydomonas reinhardtii.
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Goldschmidt-Clermont M.: Coordination of nuclear and chloroplast gene expression in plant cells.
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Boudreau E., Turmel M., Goldschmidt-Clermont M., Rochaix J.D., Sivan S., Michaels A. & Leu S.: A large open reading frame (orf1995) in the chloroplast DNA of Chlamydomonas reinhardtii encodes an essential protein.
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Turmel M., Choquet Y., Goldschmidt-Clermont M., Rochaix J.D., Otis C. & Lemieux C.: The trans-spliced intron 1 in the psaA gene of the Chlamydomonas chloroplast: a comparative analysis.
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Takahashi Y., Matsumoto H., Goldschmidt-Clermont M. & Rochaix J.D.: Directed disruption of the Chlamydomonas chloroplast psbK gene destabilizes the photosystem II reaction center complex.
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Monod C., Takahashi Y., Goldschmidt-Clermont M. & Rochaix J.D.: The chloroplast ycf8 open reading frame encodes a photosystem II polypeptide which maintains photosynthetic activity under adverse growth conditions.
EMBO J 1994, 13(12):2747-2754. PMID: 8026459.

Li J., Goldschmidt-Clermont M. & Timko M.P.: Chloroplast-encoded chlB is required for light-independent protochlorophyllide reductase activity in Chlamydomonas reinhardtii.
Plant Cell 1993, 5(12):1817-1829. PMID: 8305874.

Monod C., Goldschmidt-Clermont M. & Rochaix J.D.: Accumulation of chloroplast psbB RNA requires a nuclear factor in Chlamydomonas reinhardtii.
Mol Gen Genet 1992, 231(3):449-459. PMID: 1371579.

Takahashi Y., Goldschmidt-Clermont M., Soen S.Y., Franzen L.G. & Rochaix J.D.: Directed chloroplast transformation in Chlamydomonas reinhardtii: insertional inactivation of the psaC gene encoding the iron sulfur protein destabilizes photosystem I.
EMBO J 1991, 10(8):2033-2040. PMID: 1712288.

Goldschmidt-Clermont M., Choquet Y., Girard-Bascou J., Michel F., Schirmer-Rahire M. & Rochaix J.D.: A small chloroplast RNA may be required for trans-splicing in Chlamydomonas reinhardtii.
Cell 1991, 65(1):135-143. PMID: 1707343.

Goldschmidt-Clermont M.: Transgenic expression of aminoglycoside adenine transferase in the chloroplast: a selectable marker of site-directed transformation of chlamydomonas.
Nucleic Acids Res 1991, 19(15):4083-4089. PMID: 1651475.

Goldschmidt-Clermont M., Girard-Bascou J., Choquet Y. & Rochaix J.D.: Trans-splicing mutants of Chlamydomonas reinhardtii.
Mol Gen Genet 1990, 223(3):417-425. PMID: 2270082.

Kuchka M.R., Goldschmidt-Clermont M., van Dillewijn J. & Rochaix J.D.: Mutation at the Chlamydomonas nuclear NAC2 locus specifically affects stability of the chloroplast psbD transcript encoding polypeptide D2 of PS II.
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Goldschmidt-Clermont M., Malnoe P. & Rochaix J.D.: Preparation of chlamydomonas chloroplasts for the in vitro import of polypeptide precursors.
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Choquet Y., Goldschmidt-Clermont M., Girard-Bascou J., Kuck U., Bennoun P. & Rochaix J.D.: Mutant phenotypes support a trans-splicing mechanism for the expression of the tripartite psaA gene in the C. reinhardtii chloroplast.
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Amati B.B., Goldschmidt-Clermont M., Wallace C.J. & Rochaix J.D.: cDNA and deduced amino acid sequences of cytochrome c from Chlamydomonas reinhardtii: unexpected functional and phylogenetic implications.
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Hurt E.C., Soltanifar N., Goldschmidt-Clermont M., Rochaix J.D. & Schatz G.: The cleavable pre-sequence of an imported chloroplast protein directs attached polypeptides into yeast mitochondria.
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Hurt E.C., Goldschmidt-Clermont M., Pesold-Hurt B., Rochaix J.D. & Schatz G.: A mitochondrial presequence can transport a chloroplast-encoded protein into yeast mitochondria.
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Goldschmidt-Clermont M. & Rahire M.: Sequence, evolution and differential expression of the two genes encoding variant small subunits of ribulose bisphosphate carboxylase/oxygenase in Chlamydomonas reinhardtii.
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Goldschmidt-Clermont M.: The two genes for the small subunit of RuBP Carboxylase / Oxygenase are closely linked in Chlamydomonas reinhardtii.
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Spreitzer R.J., Goldschmidt-Clermont M., Rahire M. & Rochaix J.D.: Nonsense mutations in the Chlamydomonas chloroplast gene that codes for the large subunit of ribulosebisphosphate carboxylase/oxygenase.
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Hogness D.S., Lipshitz H.D., Beachy P.A., Peattie D.A., Saint R.B., Goldschmidt-Clermont M., Harte P.J., Gavis E.R. & Helfand S.L.: Regulation and products of the Ubx domain of the bithorax complex.
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Voellmy R., Goldschmidt-Clermont M., Southgate R., Tissieres A., Levis R. & Gehring W.: A DNA segment isolated from chromosomal site 67B in D. melanogaster contains four closely linked heat-shock genes.
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Goldschmidt-Clermont M.: Two genes for the major heat-shock protein of Drosophila melanogaster arranged as an inverted repeat.
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Ish-Horowicz D., Pinchin S.M., Gausz J., Gyurkovics H., Bencze G., Goldschmidt-Clermont M. & Holden J.J.: Deletion mapping of two D. melanogaster loci that code for the 70,000 dalton heat-induced protein.
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Schedl P., Artavanis-Tsakonas S., Steward R., Gehring W.J., Mirault M.E., Goldschmidt-Clermont M., Moran L. & Tissieres A.: Two hybrid plasmids with D. melanogaster DNA sequences complementary to mRNA coding for the major heat shock protein.
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Moran L., Mirault M.E., Arrigo A.P., Goldschmidt-Clermont M. & Tissieres A.: Heat shock of Drosophila melanogaster induces the synthesis of new messenger RNAs and proteins.
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Mirault M.E., Goldschmidt-Clermont M., Moran L., Arrigo A.P. & Tissieres A.: The effect of heat shock on gene expression in Drosophila melanogaster.
Cold Spring Harb Symp Quant Biol 1978, 42 Pt 2:819-827. PMID: 98271.

 


 

Publications: chapitres de livre

Goldschmidt-Clermont M.: Chloroplast Splicing.
In: The Chlamydomonas Sourcebook, Organellar and Metabolic Processes. 2008, pp. 915-935. Ed. by Stern D.B., Second edn. Elsevier (The Netherlands).

Goldschmidt-Clermont M.: Genetics of photosynthesis.
In: Encyclopedia of Genetics. 2001, pp. 1459-1465. Ed. by Brenner S. & Miller J. Academic Press (London, U.K.).

Herrin D., Kuo T.C. & Goldschmidt-Clermont M.: RNA splicing in the chloroplast.
In: The molecular biology of chloroplasts and mitochondria in Chlamydomonas. 1998, pp. 183-195. Ed. by Rochaix J.-D., Goldschmidt-Clermont M. & Merchant S. Kluwer Acad. Publ. (The Netherlands).

Goldschmidt-Clermont M.: Chloroplast transformation.
In: The molecular biology of chloroplasts and mitochondria in Chlamydomonas. 1998, pp. 139-149. Ed. by Rochaix J.-D., Goldschmidt-Clermont M. & Merchant S. Kluwer Acad. Publ. (The Netherlands).

Rochaix J.-D., Mayfield S., Goldschmidt-Clermont M. & Erickson J.M.: Molecular biology of Chlamydomonas.
In: Plant molecular biology: a practical approach. 1988, pp. 253-275. Ed. by Schaw C.H. IRL Press (Oxford).

Rochaix J.-D., Erickson J.M., Goldschmidt-Clermont M., Herz M., Spreitzer R.J. & Vallet J.M.: Molecular genetics of Photosynthesis and Transformation in Chlamydomonas reinhardtii.
In: Molecular Developmental Biology. 1986: vol. 27-43. Ed. by Bogorad L. Alan Liss (New-York).

Rochaix J.-D., Erickson J.M., Goldschmidt-Clermont M., Schneider M. & Vallet J.M.: Chlamydomonas reinhardii, a potential model system for chloroplast manipulation.
In: Gene manipulation in plant improvement. 1984, pp. 577-603. Ed. by Gustafson J.P. Plenum Publishing Corporation.

Goldschmidt-Clermont M., Dron M., Erickson J.M., Rochaix J.-D., Schneider M., Spreitzer R. & Vallet J.-M.: Structure and expression of chloroplast and nuclear genes in Chlamydomonas reinhardii.
In: Compartments in algal cells and their interactions. 1984, pp. 23-27. Ed. by Wiesner W., Robinson D.G. & Starr R.C. Springer Verlag (Berlin).

Artavanis-Tsakonas S., Schedl P., Steward R., Gehring W.J., Mirault M.-E., Moran L., Goldschmidt-Clermont M., Arrigo P.A., Tissières A. & Lis J.: Heat-activated genes of Drosophila melanogaster.
In: Specific eukaryotic genes. 1979: vol. 13, pp. 72-84. Munskaard (Copenhaguen).