Remerciements
Abréviations
Résumé court
1. Résumé
1.1 [
125
I]IdUrd et Bloquage de la Synthèse de dThd
1.2 [
125
I]IdUrd et IdUrd non-marquée
1.3 [
125
I]IdUrd et Mélange de Désoxyribonucléosides
2. Introduction
2.1 Ciblage Tumoral
2.2 Cycle Cellulaire
2.3 Régulation du Cycle Cellulaire
2.3.1 Synthèse et destruction cycliques de protéines
2.3.2 Complexes CDK4 et CDK6 - cycline D
2.3.3 Protéines pRB et E2Fs
2.3.4 Complexes CDK2 - cyclines A et E
2.3.5 Autres complexes enzymatiques
2.3.6 Protéine p21
CIP1
2.3.7 Protéine p27
KIP1
2.3.8 Protéines p16
INK4a
, p15
INK4b
, p18
INK4c
, et p19
INK4d
2.3.9 Protéine p53
2.4 Synthèse et Réparation de l'ADN
2.4.1 Transmission de l'information génétique
2.4.2 Structure des nucléotides
2.4.3 Structure des acides nucléiques
2.4.4 Réplication de l'ADN
2.4.5 Réparation de l'ADN
2.5 Régulation Allostérique de la Synthèse des Nucléotides
2.6 Inhibition de la Synthèse de Thymidine
2.7 La 5-Iodo-2'-désoxyuridine
2.7.1 Synthèse et radiomarquage
2.7.2 Radioisotopes de l'iode
2.7.3 Considérations sur une application clinique
2.7.4 Les glioblastomes comme cibles potentielles
2.8 Objectifs du travail
3. Méthodologie Générale
3.1 Radiomarquage de la IdUrd
3.2 Contrôle de Qualité du Radiomarquage
3.3 Lignées Cellulaires et Conditions de Culture
3.4 Évaluation de la Cytotoxicité
3.4.1 Essais Colorimétriques MTT
3.4.2 Essais Clonogéniques
3.5 Test d'Incorporation dans l'ADN
3.6 Cytofluorométrie en Flux
3.7 Souris et Modèle de Tumeur
3.8 Biodistributions
3.9 Évaluation du Perchlorate de Potassium
3.10 Histologie et Autoradiographie
3.11 Extraction de l'ADN de la Tumeur et de l'Intestin
3.12 Activité Enzymatique de la TS et la TK
3.13Marquage de l'Apoptose par test «TUNEL»
3.14 Scintigraphies
3.15Estimation dosimétrique
4. [
125
I]IdUrd et Fluorodésoxyuridine
4.1 Résumé
4.2 Introduction
4.3 Matériel et Méthodes
4.4 Résultats
4.4.1 Modulation de l'incorporation de[
125
I]IdUrd et [
3
H]dThd dans l'ADN par la FdUrd
4.4.2 Modulation de la cytotoxicité de la [
125
I]IdUrd par la FdUrd
4.4.3 Distribution dans le cycle cellulaire après exposition courte ou prolongée à la FdUrd
4.4.4 Biodistribution de [
125
I]IdUrd dans des souris xénogreffées après pré-injections de FdUrd
4.4.5 Pourcentage de la radioactivité mesurée dans le tissu qui est effectivement incorporé dans l'ADN
4.4.6 Cytotoxicité d'une administration combinée de [
125
I]IdUrd et FdUrd
4.4.7Détection tumorale par scintigraphie après traitement avec FdUrd et KClO
4
4.4.8 Dosimétrie préclinique d'une scintigraphie avec la [
123
I]IdUrd
4.5 Discussion
5. [
125
I]IdUrd et IdUrd non-marquée
5.1 Résumé
5.2 Introduction
5.3 Matériel et Méthodes
5.4 Résultats
5.4.1 Survie cellulaire après traitement avec [
125
I]IdUrd
5.4.2 Modulation de la cytotoxicité de la [
125
I]IdUrd par la IdUrd
5.4.3 Modulation de l'incorporation de [
125
I]IdUrd par la IdUrd
5.4.4 Incorporation de [
125
I]IdUrd en présence d'analogues de la IdUrd
5.4.5 Modulation de l'incorporation de [
125
I]IdUrd par la IdUrd en fonction de la densité cellulaire
5.4.6 Distribution des cellules dans le cycle cellulaire après exposition avec la IdUrd
5.4.7 Biodistribution de la [
125
I]IdUrd dans les souris xénogreffées après pré-injections de IdUrd
5.5 Discussion
6. [
125
I]IdUrd et Mélange de Désoxyribonucléosides
6.1 Résumé
6.2 Introduction
6.3 Matériels et Méthodes
6.4 Résultats
6.4.1 Incorporation de [
125
I]IdUrd dans l'ADN après coincubation avec différents mélanges de désoxyribonucléosides
6.4.2 Incorporation de [
125
I]IdUrd dans l'ADN après préincubation avec le mélange AUGC
6.4.3 Incorporation de [
125
I]IdUrd dans l'ADN en fonction du temps de coincubation avec le mélange AUGC
6.4.4 Modulation de l'incorporation de [
125
I]IdUrd dans l'ADN par le mélange AUGC en fonction de la densité cellulaire
6.4.5 Distribution des cellules confluentes dans le cycle cellulaire après exposition au mélange AUGC
6.5 Discussion
7. Conclusions
8. Bibliographie
9. Liste des publications personnelles