Objectifs

• Mettre en pratique des techniques de bases d’analyse des protéines
• Pouvoir mettre en évidence une protéine à partir de cellules de mammifères grâce à des méthodes de biologie

Contenu

• Extraction de protéines à partir d’un culot cellulaire
• Quantification des protéines par méthode colorimétrique
• Séparation et visualisation des protéines sur gel de polyacrylamide
• Visualisation d’une protéine spécifique par western-blot
• Interprétation des résultats

Méthodes

• Exposés théoriques à distance, exercices, travaux dirigés
• Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments: 10 participant-es maximum

Pré-requis

• Connaissances théoriques de base sur la structure des protéines
• Connaissances pratiques de base de laboratoire conseillées

3 jours en présence: 20h de pratique + 4h de théorie appliquée à la pratique

Objectifs

• Acquérir les bases théoriques et pratiques en biologie moléculaire
• Comprendre les différentes étapes pratiques nécessaires à la mise en évidence d’un gène.
• Être capable d’interpréter et analyser des données de biologie moléculaire

Contenu

• Extraction d’ADN à partir d’un culot cellulaire
• Amplification d’un gène d’intérêt par PCR
• Purification sur colonne du produit PCR
• Visualisation du gène sur gel d’agarose
• Séquençage du gène isolé
• Interprétation des résultats de séquençage

Méthodes

• Exposés théoriques à distance, exercices, travaux dirigés
• Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments: 10 participant-es maximum

Pré-requis

• Connaissances théoriques de base sur la structure de l’ADN
• Connaissances pratiques de base de laboratoire conseillées

2 jours: 8h de pratique en présence + 4h de théorie appliquée à la pratique à distance

Objectifs

• Acquérir les concepts théoriques de base du système CRISPR/Cas9
• Acquérir les notions théoriques et pratiques des techniques de clonage
• Être capable d’interpréter et analyser des résultats de clonage et de transfection avec le système CRISPR/Cas9

Contenu pratique

• Explication du système CRISPR/Cas9
• Types de vecteurs et leurs applications
• Techniques de clonage

Contenu théorique

• Explication du système CRISPR/Cas9
• Types de vecteurs et leurs applications
• Techniques

Méthodes

• Exposés théoriques, exercices, travaux dirigés
• Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments et des logiciels dédiés au clonage: 10 participant-es maximum

Pré-requis

• Connaissances théoriques de base sur la structure de l’ADN
• Connaissances pratiques de base de laboratoire conseillées

4 jours en présence: 24h de pratique + 8h de théorie appliquée à la pratique

Objectifs

• Acquérir les bases théoriques des enzymes et leurs réactions
• Connaître les types d’inhibition enzymatique
• Comprendre les différentes étapes pratiques nécessaires au déroulement d’une réaction enzymatique
• Identifier les méthodes adéquates pour le suivi d’une réaction enzymatique
• Analyser et interpréter des données obtenues lors d’un suivi de réaction enzymatique

Contenu

• Enzymes
• Réactions enzymatiques
• Cinétique enzymatique de Michaelis-Menten
• Types d’inhibition enzymatique
• Détermination des paramètres de cinétique enzymatique par spectrophotométrie
• Détermination pratique du type d’inhibition des différents inhibiteurs
• Détermination de la puissance d’un inhibiteur enzymatique par HPLC: IC50

Méthodes

Exposés théoriques, exercices, travaux dirigés
Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments: 10 participant-es maximum

Pré-requis

Connaissances théoriques de base sur la structure des protéines et des petites molécules
Connaissances pratiques de base de laboratoire conseillées

3 jours en présence: 18h de pratique + 6h de théorie appliquée à la pratique

Objectifs

• Connaître les principes de chromatographie en phase liquide et en phase gazeuse
• Comprendre les conditions nécessaires au bon déroulement des analyses en GC et HPLC
• Se familiariser avec les détecteurs FID et UV en couplage à la GC et à l’HPLC, respectivement
• Savoir préparer des solutions pour une gamme d’étalonnage et pour des échantillons à doser
• Savoir réaliser des analyses à partir d’une méthode chromatographique déjà développée
• Identifier les méthodes possibles pour les dosages en GC/FID et HPLC/UV
• Interpréter des données chromatographiques pour le calcul de dose

Contenu

• Introduction à la GC et à l’HPLC
• Notions pratiques de phase mobile et de phase stationnaire: éluants et colonnes
• Domaines d’application pratique de la GC et de l’HPLC
• Introduction aux différentes méthodes d’étalonnage et leurs implications pratiques
• Expérience pratique pour le dosage d’une substance odorante au sein d’un mélange par GC/FID à l’aide de la méthode des ajouts dosés avec étalon interne
• Expérience pratique pour le dosage d’une substance UV-active au sein d’un mélange par HPLC/UV à l’aide d’un étalonnage externe
• Utilisation des données expérimentales pour le calcul de la concentration des substances analysées dans un mélange inconnu

Méthodes

• Exposés théoriques, exercices, travaux dirigés
• Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments: 10 participant-es maximum

Pré-requis

• Connaissances théoriques de base sur la structure chimique de petites molécules.
• Connaissances théoriques de base en utilisation d’Excel

3 jours en présence: 20h de pratique + 4h de théorie appliquée à la pratique