Les inscriptions sont ouvertes!!
Les inscriptions pour la session 2025-2026 sont ouvertes.
Le délai d'inscription pour la session entière (6 modules) est fixée au 25 septembre 2025.
Vous souhaitez suivre un seul module ? Il est possible de s'inscrire jusqu'à 10 jours avant le début du module choisi.
En bref
Objectifs
- Acquérir les bases pratiques des techniques récentes en laboratoire de chimie et biologie
- Suivre l’évolution des techniques existantes dans les domaines du laboratoire
- Mettre en pratique des compétences transversales entre la chimie et la biologie
- Appliquer les contenus à des exemples concrets de travail pratique en chimie et biologie
Public
Compétences visées
- Acquérir des connaissances et une compréhension de niveau professionnel dans les domaines hautement spécialisés et pluridisciplinaires, impliquant la chimie et la biologie pratiques
- Appliquer des méthodes innovantes dans la pratique professionnelle de la chimie et de la biologie dans un environnement de recherche, de production ou de service
- Adopter une démarche qualité lors de l’exécution des expériences en laboratoire de chimie et biologie
- Communiquer, clairement et sans ambiguïté, des résultats pratiques de laboratoire à différents groupes d’interlocuteurs/trices
- Appliquer de façon autonome les méthodes et techniques en lien avec leur pratique professionnelle correspondante
Programme
6 modules
- Méthodes en biologie moléculaire
- Clonage des vecteurs appliqués à CRISPR/Cas9
- Culture cellulaire et transfection: applications CRISPR/Cas9
- Méthodes en biochimie des protéines
- Réactions enzymatiques et méthodes de suivi (annulé)
- Initiation pratique au dosage par l'HPLC/UV
Titre obtenu
Inscription
Délai d'inscription
Finance d'inscription:
Inscription par module(s) possible - prix du module: dès 950 CHF (sans ECTS)
Session complète (6 modules): 7'650 CHF (sans ECTS) / 8'850 CHF (avec ECTS)
Détails des prix par module (avec/sans ECTS), se référer à la section Cursus.
Conditions d'admission
Être un-e professionnel-le de laboratoire exerçant un rôle technique/pratique: laborantin-e CFC, technicien-ne ES, chimiste ou biologiste exerçant des tâches techniques, ainsi que toute personne formée ou en formation dans le domaine du laboratoire nécessitant un complément pratique.
Nombre de participant-es
Conditions d'annulation
Tout abandon avant le début du programme entraîne une facturation d’un montant de CHF 50.- pour frais de dossier. Dès le premier jour de la formation, la totalité de la somme est due.
Cursus
Période
Crédits
Horaires d'enseignement
8h00 - 12h30 et 13h30 - 17h30 (pause incluse)
Date(s)
Lieu
Description
Objectifs
- Acquérir les bases théoriques et pratiques en biologie moléculaire
- Comprendre les différentes étapes pratiques nécessaires à la mise en évidence d’un gène.
- Être capable d’analyser et interpréter des données de biologie moléculaire
Contenu
- Extraction d’ADN à partir d’un culot cellulaire
- Quantification de l'ADN par spectrophotométrie et fluorimétrie
- Amplification d’un gène d’intérêt par PCR
- Purification sur colonne du produit PCR
- Visualisation du gène sur gel d’agarose
- Introduction à la PCR en temps réel (qPCR)
- Séquençage du gène isolé
- Analyse et interprétation des résultats
Méthodes
- Exposés théoriques, exercices, travaux dirigés
- Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments : 8 participant-es maximum
Pré-requis
- Connaissances théoriques de base sur la structure de l’ADN
- Connaissances pratiques de base de laboratoire conseillées
Planning
- 2 jours : 12 h de pratique + 4 h de théorie appliquée à la pratique
Prix
- 950 CHF (sans ECTS)
- 1'100 CHF (avec ECTS)
Intervenant-es
Date(s)
Lieu
Description
Objectifs
- Acquérir les concepts théoriques de base du système CRISPR/Cas9
- Acquérir les notions théoriques et pratiques des techniques de clonage
- Être capable d’analyser et interpréter des résultats de clonage et de transfection avec le système CRISPR/Cas9
Contenu
- Explication du système CRISPR/Cas9
- Types de vecteurs et leurs applications
- Techniques de clonage
- Design des séquences d'ARN guide pour le clonage appliqué à CRISPR/Cas9
- Design de clonage moléculaire par assemblage Gibson à partir d'un plasmide contenant la séquence Cas9
- Clonage moléculaire d'un plasmide d'ARN guide : insertion de la séquence guide d'intérêt par assemblage Gibson
- Transformation bactérienne E.coli
- Vérification des séquences par analyse des résultats de séquençage
- Amplification et purification des plasmides
- Analyse des séquences d'ADN obtenues à partir des cellules de mammifères transfectées avec le système CRISPR/Cas9
Méthodes
- Exposés théoriques, exercices, travaux dirigés
- Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments et des logiciels dédiés au clonage et au design d'ARN guides : 8 participant-es maximum
Pré-requis
- Connaissances théoriques de base sur la structure de l’ADN
- Connaissances pratiques de base de laboratoire et de biologie moléculaire conseillées
Planning
- 4 jours : 24 h de pratique + 8 h de théorie appliquée à la pratique
Prix
- 1'500 CHF (sans ECTS)
- 1'750 CHF (avec ECTS)
Intervenant-es
Lieu
Description
Objectifs
- Acquérir les bases théoriques des enzymes et leurs réactions
- Connaître les types d’inhibition enzymatique
- Comprendre les différentes étapes pratiques nécessaires au déroulement d’une réaction enzymatique
- Identifier les méthodes adéquates pour le suivi d’une réaction enzymatique
- Analyser et interpréter des données obtenues lors d’un suivi de réaction enzymatique
Contenu
- Enzymes
- Réactions enzymatiques
- Cinétique enzymatique de Michaelis-Menten
- Types d’inhibition enzymatique
- Détermination des paramètres de cinétique enzymatique par spectrophotométrie
- Détermination pratique du type d’inhibition des différents inhibiteurs
- Détermination de la puissance d’un inhibiteur enzymatique par HPLC: IC50
Méthodes
- Exposés théoriques en présentiel et à distance, exercices, travaux dirigés
- Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments : 8 participant-es maximum
Pré-requis
- Connaissances théoriques de base sur la structure des protéines et des petites molécules
- Connaissances pratiques de base de laboratoire conseillées
Planning
- 2 jours en présentiel et 1 journée à distance : 16 h de pratique en présence + 8 h de théorie appliquée à la pratique à distance
Prix
- 1'500 CHF (sans ECTS)
- 1'650 CHF (avec ECTS)
Intervenant-es
Date(s)
Lieu
Description
Objectifs
- Comprendre les étapes clés en culture cellulaire
- Mettre en culture des cellules eucaryotes
- Appliquer ces méthodes en laboratoire
- Analyser et interpréter
Contenu
- Préparation de milieux et des surfaces de culture (coating)
- Décongélation et congélation des cellules
- Passage et amplification
- Comptage manuel et automatique
- Ensemencement sur différents supports
- Application d’utilisation de ces cellules: transfection CRISPR-Cas9, génération de sphéroïdes (3D), essai cellulaire et test de viabilité
- Analyse et interprétation des données cellulaires
Méthodes
- Exposés théoriques en présentiel
- Travaux pratiques individuels en laboratoire : 6 participant-es maximum
Pré-requis
- Connaissances pratiques de base de laboratoire conseillées
Planning
- 3 jours : 2 h / jour de théorie appliquée à la pratique et 6 h / jour de pratique
Prix
- 1'700 CHF (sans ECTS)
- 1'850 CHF (avec ECTS)
Intervenant-es
Date(s)
Lieu
Description
Objectifs
- Mettre en pratique des techniques de bases d’analyse des protéines
- Pouvoir mettre en évidence une protéine à partir de cellules de mammifères grâce à des méthodes de biologie
Contenu
- Extraction de protéines à partir d’un culot cellulaire
- Quantification des protéines par méthode colorimétrique
- Séparation et visualisation des protéines sur gel de polyacrylamide
- Visualisation d’une protéine spécifique par western-blot
- Analyse et interprétation des résultats
Méthodes
- Exposés théoriques, exercices, travaux dirigés
- Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments : 8 participant-es maximum
Pré-requis
- Connaissances théoriques de base sur la structure des protéines
- Connaissances pratiques de base de laboratoire conseillées
Planning
- 3 jours : 20 h de pratique + 4 h de théorie appliquée à la pratique
Prix
- 1'500 CHF (sans ECTS)
- 1'650 CHF (avec ECTS)
Intervenant-es
Date(s)
Lieu
Description
Objectifs
- Connaître les principes de chromatographie en phase liquide
- Comprendre les conditions nécessaires au bon déroulement des analyses HPLC
- Se familiariser avec les détecteurs UV en couplage à l’HPLC
- Savoir préparer des solutions pour une gamme d’étalonnage et pour des échantillons à doser
- Savoir réaliser des analyses à partir d’une méthode chromatographique déjà développée
- Identifier les méthodes possibles pour les dosages HPLC/UV
- Analyser et interpréter des données chromatographiques pour le calcul de dose
Contenu
- Introduction à l’HPLC
- Notions pratiques de phase mobile et de phase stationnaire : éluants et colonnes
- Domaines d’application pratique de l’HPLC
- Introduction aux différentes méthodes d’étalonnage et leurs implications pratiques
- Préparation des standards de calibration et des échantillons à doser
- Dosage d’une substance UV-active au sein d’un mélange par HPLC/UV à l’aide d’un étalonnage externe ou d'un étalonnage interne ou d'ajouts dosés
- Analyse des données expérimentales pour le calcul de la concentration des substances analysées dans un mélange inconnu
Méthodes
- Exposés théoriques en présentiel et à distance, exercices, travaux dirigés
- Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments : 8 participant-es maximum
Pré-requis
- Connaissances théoriques de base sur la structure chimique de petites molécules.
- Connaissances théoriques de base en utilisation d’Excel
Planning
- 2 jours en présentiel et 1 journée à distance : 16 h de pratique en présence + 8 h de théorie appliquée à la pratique à distance
Prix
- 1'500 CHF (sans ECTS)
- 1'800 CHF (avec ECTS)
Intervenant-es
Méthodes d'enseignement/modalités pédagogiques
- Travaux pratiques individuels
- Enseignement théorique en présence
- Enseignement à distance pour certains concepts théoriques via la plateforme Moodle
- Partage d’expériences entre participant-es
Intervenant-es
Enseignant-es
- Prof. Adrien Roux, HEPIA
- Vanessa Lapierre Fétaud, biologiste, Faculté des sciences – UNIGE
- Marine Dubois, biologiste, Faculté des sciences - UNIGE
- Nicolas Borgnana, chimiste, Faculté des sciences - UNIGE
Laborantin-es
- Laetitia Nikles, HEPIA
- Gaël Vieille, AGEMEL - UNIGE
- Melody Fillon, AGEMEL - UNIGE
- Fabien Félix, AGEMEL - UNIGE
Partenariats / Collaborations
Soutien


Direction
Dre Virginie HAMEL, Faculté des sciences, Université de Genève