Session Pratiques en laboratoire de chimie et biologie 2022

Cette session permet au personnel technique en laboratoire d'acquérir des compétences pratiques et transversales dans différents domaines de la biologie et de la chimie appliquées. Elle vise à découvrir des techniques récentes par la pratique en laboratoire en adoptant une démarche qualité.

Informations

Période

26 avril 2022 - 16 juin 2022
8 Crédits ECTS
Sans ECTS: Session de 140 heures; Avec ECTS: Session de 208 heures, dont 68 heures de travail personnel; L’enseignement est majoritairement en présence avec 75% de pratique et 25% de théorie appliquée à la pratique.

Langue

Français

Format

En présence – basculement en ligne en cas de nécessité

Renseignements

Lieu

Centre médical universitaire (CMU)

Inscriptions

Délai d'inscription

4 avril 2022
Inscriptions par module possible
Pour les modules, délai d'inscription au plus tard 2 semaines avant chaque module.

Finance d'inscription:

Session complète (6 modules): CHF 7550.- (sans ECTS) / CHF 8650.- (avec ECTS)

Modules: Pour le financement d'inscription des modules individuels, voir onglet "Informations complémentaires"

Objectifs

  • Acquérir les bases pratiques des techniques récentes en laboratoire de chimie et biologie
  • Suivre l’évolution des techniques existantes dans les domaines du laboratoire
  • Mettre en pratique des compétences transversales entre la chimie et la biologie
  • Appliquer les contenus à des exemples concrets de travail pratique en chimie et biologie

Public

Professionnel-le de laboratoire exerçant un rôle technique/pratique: laborantin-e CFC, technicien-ne, chimiste et biologiste exerçant des tâches techniques, ainsi que toute personne formée ou en formation dans le domaine du laboratoire nécessitant un complément pratique

Compétences visées

  • Acquérir des connaissances et une compréhension de niveau professionnel (CFC) dans les domaines hautement spécialisés et pluridisciplinaires, impliquant la chimie et la biologie pratiques
  • Appliquer des méthodes innovantes dans la pratique professionnelle de la chimie et de la biologie dans un environnement de recherche, de production ou de service
  • Adopter une démarche qualité lors de l’exécution des expériences en laboratoire de chimie et biologie
  • Communiquer, clairement et sans ambiguïté, des résultats pratiques de laboratoire à différents groupes d’interlocuteurs/trices
  • Appliquer de façon autonome les méthodes et techniques en lien avec leur pratique professionnelle correspondante

Programme

6 modules

  • Culture cellulaire et transfection: applications CRISPR/Cas9
  • Méthodes en biochimie des protéines
  • Méthodes en biologie moléculaire
  • Clonage des vecteurs appliqués à CRISPR/Cas9
  • Réactions enzymatiques et méthodes de suivi
  • Initiation pratique au dosage par chromatographie

Direction

Dre Claudia SIMOES AVELLO, Faculté des sciences, Université de Genève

Coordination

Vanessa LAPIERRE FÉTAUD, Faculté des sciences, Université de Genève

Date(s)

3 mai 2022
4 mai 2022
5 mai 2022

Description

Objectifs

  • Comprendre les étapes clés en culture cellulaire
  • Mettre en culture des cellules eucaryotes
  • Appliquer ces méthodes en laboratoire
  • Interpréter et analyser

 

Contenu

  • Préparation de milieux et des surfaces de culture (coating)
  • Décongélation et congélation des cellules
  • Passage et amplification
  • Comptage manuel et automatique
  • Ensemencement sur différents supports
  • Application d’utilisation de ces cellules: transfection CRISPR-Cas9, génération de sphéroïdes (3D), essai cellulaire et test de viabilité
  • Analyse et interprétation des données cellulaires

 

Méthodes

  • Exposés théoriques en présence
  • Travaux pratiques individuels en laboratoire P1 et P2 sur

 

Pré-requis

  • Connaissances pratiques de base de laboratoire conseillées

Planning

3 jours: 2h/jour de théorie appliquée à la pratique et 6h/jour de pratique

Date(s)

21 juin 2022
22 juin 2022
23 juin 2022

Description

Objectifs

  • Mettre en pratique des techniques de bases d’analyse des protéines
  • Pouvoir mettre en évidence une protéine à partir de cellules de mammifères grâce à des méthodes de biologie

 

Contenu

  • Extraction de protéines à partir d’un culot cellulaire
  • Quantification des protéines par méthode colorimétrique
  • Séparation et visualisation des protéines sur gel de polyacrylamide
  • Visualisation d’une protéine spécifique par western-blot
  • Interprétation des résultats

 

Méthodes

  • Exposés théoriques à distance, exercices, travaux dirigés
  • Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments: 10 participant-es maximum

 

Pré-requis

  • Connaissances théoriques de base sur la structure des protéines
  • Connaissances pratiques de base de laboratoire conseillées

Planning

3 jours en présence: 20h de pratique + 4h de théorie appliquée à la pratique

    Date(s)

    26 avril 2022
    27 avril 2022

    Description

    Objectifs

    • Acquérir les bases théoriques et pratiques en biologie moléculaire
    • Comprendre les différentes étapes pratiques nécessaires à la mise en évidence d’un gène.
    • Être capable d’interpréter et analyser des données de biologie moléculaire

     

    Contenu

    • Extraction d’ADN à partir d’un culot cellulaire
    • Amplification d’un gène d’intérêt par PCR
    • Purification sur colonne du produit PCR
    • Visualisation du gène sur gel d’agarose
    • Séquençage du gène isolé
    • Interprétation des résultats de séquençage

     

    Méthodes

    • Exposés théoriques à distance, exercices, travaux dirigés
    • Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments: 10 participant-es maximum

     

    Pré-requis

    • Connaissances théoriques de base sur la structure de l’ADN
    • Connaissances pratiques de base de laboratoire conseillées

    Planning

    2 jours: 8h de pratique en présence + 4h de théorie appliquée à la pratique à distance

    Date(s)

    17 mai 2022
    18 mai 2022
    19 mai 2022
    20 mai 2022

    Description

    Objectifs

    • Acquérir les concepts théoriques de base du système CRISPR/Cas9
    • Acquérir les notions théoriques et pratiques des techniques de clonage
    • Être capable d’interpréter et analyser des résultats de clonage et de transfection avec le système CRISPR/Cas9

     

    Contenu pratique

    • Explication du système CRISPR/Cas9
    • Types de vecteurs et leurs applications
    • Techniques de clonage

     

    Contenu théorique

    • Explication du système CRISPR/Cas9
    • Types de vecteurs et leurs applications
    • Techniques

     

    Méthodes

    • Exposés théoriques, exercices, travaux dirigés
    • Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments et des logiciels dédiés au clonage: 10 participant-es maximum

     

    Pré-requis

    • Connaissances théoriques de base sur la structure de l’ADN
    • Connaissances pratiques de base de laboratoire conseillées

    Planning

    4 jours en présence: 24h de pratique + 8h de théorie appliquée à la pratique

    Date(s)

    31 mai 2022
    1 juin 2022
    2 juin 2022

    Description

    Objectifs

    • Acquérir les bases théoriques des enzymes et leurs réactions
    • Connaître les types d’inhibition enzymatique
    • Comprendre les différentes étapes pratiques nécessaires au déroulement d’une réaction enzymatique
    • Identifier les méthodes adéquates pour le suivi d’une réaction enzymatique
    • Analyser et interpréter des données obtenues lors d’un suivi de réaction enzymatique

     

    Contenu

    • Enzymes
    • Réactions enzymatiques
    • Cinétique enzymatique de Michaelis-Menten
    • Types d’inhibition enzymatique
    • Détermination des paramètres de cinétique enzymatique par spectrophotométrie
    • Détermination pratique du type d’inhibition des différents inhibiteurs
    • Détermination de la puissance d’un inhibiteur enzymatique par HPLC: IC50

     

    Méthodes

    Exposés théoriques, exercices, travaux dirigés
    Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments: 10 participant-es maximum

     

    Pré-requis

    Connaissances théoriques de base sur la structure des protéines et des petites molécules
    Connaissances pratiques de base de laboratoire conseillées

    Planning

    3 jours en présence: 18h de pratique + 6h de théorie appliquée à la pratique

    Date(s)

    14 juin 2022
    15 juin 2022
    16 juin 2022

    Description

    Objectifs

    • Connaître les principes de chromatographie en phase liquide et en phase gazeuse
    • Comprendre les conditions nécessaires au bon déroulement des analyses en GC et HPLC
    • Se familiariser avec les détecteurs FID et UV en couplage à la GC et à l’HPLC, respectivement
    • Savoir préparer des solutions pour une gamme d’étalonnage et pour des échantillons à doser
    • Savoir réaliser des analyses à partir d’une méthode chromatographique déjà développée
    • Identifier les méthodes possibles pour les dosages en GC/FID et HPLC/UV
    • Interpréter des données chromatographiques pour le calcul de dose

     

    Contenu

    • Introduction à la GC et à l’HPLC
    • Notions pratiques de phase mobile et de phase stationnaire: éluants et colonnes
    • Domaines d’application pratique de la GC et de l’HPLC
    • Introduction aux différentes méthodes d’étalonnage et leurs implications pratiques
    • Expérience pratique pour le dosage d’une substance odorante au sein d’un mélange par GC/FID à l’aide de la méthode des ajouts dosés avec étalon interne
    • Expérience pratique pour le dosage d’une substance UV-active au sein d’un mélange par HPLC/UV à l’aide d’un étalonnage externe
    • Utilisation des données expérimentales pour le calcul de la concentration des substances analysées dans un mélange inconnu

     

    Méthodes

    • Exposés théoriques, exercices, travaux dirigés
    • Travaux pratiques individuels en laboratoire sur des instruments: 10 participant-es maximum

     

    Pré-requis

    • Connaissances théoriques de base sur la structure chimique de petites molécules.
    • Connaissances théoriques de base en utilisation d’Excel

    Planning

    3 jours en présence: 20h de pratique + 4h de théorie appliquée à la pratique

      Méthodes d'enseignement/modalités pédagogiques

      • Travaux pratiques individuels
      • Enseignement théorique en présence
      • Enseignement à distance pour certains concepts théoriques via la plateforme Moodle
      • Partage d’expériences entre participant-es

      Nombre de participant-es

      Le nombre de participant-es est limité de manière à assurer une qualité d’enseignement pratique. Selon les modules, le nombre varie de 6 à 12 participant-es.

      Détails sur la finance d'inscription

      • Session complète: CHF 7'550.- sans ECTS / CHF 8'650.- avec ECTS
      • MOD 1: CHF 1'700.- sans ECTS / CHF 2'000.- avec ECTS
      • MOD 2: CHF 1'500.- sans ECTS / CHF 1'600.- avec ECTS
      • MOD 3: CHF 850.- sans ECTS / CHF 1'100.- avec ECTS
      • MOD 4: CHF 1'500.- sans ECTS / CHF 1'600.- avec ECTS
      • MOD 5: CHF 1'500.- sans ECTS / CHF 1'600.- avec ECTS
      • MOD 6: CHF 1'500.- sans ECTS / CHF 1'750.- avec ECTS

      Horaires d'enseignement

      8h00 - 12h30 et 13h30 - 17h30 (pause incluse)

      Soutien

      Enseignant-es

      • Professeur Adrien Roux, HEPIA
      • Dre Claudia Simoes Avello, responsable UFA, AGEMEL – UNIGE
      • Vanessa Lapierre Fétaud, formatrice d’apprenti-es UFA, AGEMEL –UNIGE
      • Marine Dubois, biologiste, UNIGE
      • Emmanuelle Rey, biologiste, UNIGE

       

      Laborantin-es

      • Laetitia Nikles, HEPIA
      • Mathias Buff, AGEMEL - UNIGE
      • Nicolas Low-Ders, AGEMEL - UNIGE
      • Gaël Vieille, AGEMEL - UNIGE

      Les termes utilisés pour désigner des personnes sont pris au sens générique; ils ont à la fois la valeur d'un masculin et d'un féminin.